COMPARATIVE CHARACTERISTICS OF THE DEHYDROGENASE ACTIVITY OF THE SYRIAN HAMSTER (MESOCRICETUS AURATUS) LEUKOCYTES AFTER EX VIVO INFECTION WITH VARIOUS SARS-COV-2 STRAINS

From the blood of a Syrian hamster (<I>Mesocricetus auratus</I>) was isolated the primary culture of adhesive leukocytes and infected ex vivo with the SARS-CoV-2 (Omicron and Delta strains) in two different doses, the dynamics of changes in the dehydrogenase system activity during infection development. The patterns discovered during the study have a dose-dependent nature of cell activation and also depend on the pathogen stain. A decrease in the enzymatic activity of infected cells indicates a decrease in the microbicide potential of innate immune cells in COVID-19. This is another confirmation of the dysfunction of the immune system in the process of SARS-CoV-2 infection.

1. Абрамова С.А., Дробот Е.И., Пустовалов Е.В. и др. Ультраструктурная патология клеток врождённого иммунитета при COVID-19 // Дальневосточный журнал инфекционной патологии. 2023; (45): 109-111.

2. Абрамова С.А., Сомова Л.М., Щелканов М.Ю. Морфология лейкоцитов периферической крови как один из диагностических маркеров COVID-19 // В сб.: Материалы межрегиональной научно-практической конференции и конференции молодых ученых «Ермольевские чтения. Актуальные вопросы эпидемиологического надзора за инфекционными и паразитарными заболеваниями на юге России» (Ростов-на-Дону, Россия; 26 сентября 2024 г.). Ростов-на-Дону, 2024; 23-25.

3. Абрамова С.А., Ляпун И.Н., Дробот Е.И. и др. Динамика ферментативной активности в первичной культуре адгезивных лейкоцитов сирийского хомячка, заражённых SARS-CoV-2 ex vivo // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2025; 102(2): 168-178. DOI: 10.36233/0372-9311-649.

4. Белик А.А., Семейкина Л.М., Крылова Н.В., Щелканов М.Ю. Характерные мутации SARSCOV-2 в Приморском крае в 2020-2024 годах (краткое сообщение) // Дальневосточный журнал инфекционной патологии. 2024; (47): 33-35. DOI: 10.62963/2073-2899-2024-47-33-35.

5. Бурцева Е.И., Львов Д.К., Щелканов М.Ю. и др. Особенности социркуляции вирусов гриппа в постпандемический период 2010-2011 гг. по итогам деятельности Центра экологии и эпидемиологии гриппа ФГУ НИИ вирусологии им. Д.И. Ивановского Минздравсоцразвития России // Вопросы вирусологии. 2012; 57(1): 20-28.

6. Гисина А.М., Бурунова В.В., Щелканов М.Ю. и др. Применение МТТ-метода для зондирования дегидрогеназной активности и стандартизации биохимического профиля клеточных материалов // В сб.: Материалы Всероссийской Конференции РГМУ «Стволовые клетки и перспектива их использования в здравоохранении» (Москва, Россия; 29 мая 2008 г.). М.: Изд-во РГМУ, 2008; 15-16.

7. Грибова В.В., Окунь Д.Б., Шалфеева Е.А. и др. Облачный сервис для дифференциальной клинической диагностики острых респираторных вирусных заболеваний (в том числе – связанных с особо опасными коронавирусами) методами искусственного интеллекта // Якутский медицинский журнал. 2020; (2): 44-47. DOI: 10.25789/YMJ.2020.70.13.

8. Запорожец Т.С., Беседнова Н.Н., Калинин А.В. и др. 80 лет на страже биологической безопасности у восточных рубежей России // Здоровье населения и среда обитания. 2021; (5): 5-15. DOI: 10.35627/2219-5238/2021-338-5-5-15.

9. Колобухина Л.В., Меркулова Л.Н., Малышев Н.А. и др. Стратегия ранней противовирусной терапии при гриппе как профилактика тяжёлых осложнений // Пульмонология. Приложение. 2010; (1): 9-14.

10. Колобухина Л.В., Меркулова Л.Н., Щелканов М.Ю. и др. Пандемический грипп в России: отличительные особенности клинического течения и отсутствие ранней этиотропной терапии как фактор риска развития тяжелых форм заболевания // Терапевтический архив. 2011; 83(9): 48-53.

11. Кольман Я. Наглядная биохимия. М.: Мир, 2004; 469 с.

12. Попова А.Ю., Щелканов М.Ю., Крылова Н.В. и др. Генотипический портрет SARS-CoV-2 на территории Приморского края в период пандемии COVID-19 // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2024; 101(1): 19-35. DOI: 10.36233/0372-9311-497.

13. Сомова Л.М., Дробот Е.И., Пустовалов Е.В. и др. Морфология лейкоцитов периферической крови у пациентов с новой коронавирусной инфекцией (COVID-19) // Клиническая и экспериментальная морфология. 2023; 12(3): 41-49. DOI: 10.31088/CEM2023.12.3.41-49.

14. Сомова Л.М., Абрамова С.А., Дробот Е.И. и др. Нейтрофильные синцитии в периферической крови пациентов с коронавирусной инфекцией (COVID-19) // Клиническая и экспериментальная морфология. 2024; 13(3): 26-33. DOI: 10.31088/CEM2024.13.3.26-33.

15. Щелканов Е.М., Уколов С.С., Дунаева М.Н. и др. Эхолокация рукокрылых (Chiroptera Blumenbach, 1779) как элемент их экологической пластичности // Юг России: экология, развитие. 2020; 15(4): 6-20. DOI: 10.18470/1992-1098-2020-4-6-20.

16. Щелканов М.Ю., Сахурия И.Б., Полякова Е.Б. и др. Повышение качества МТТ-метода с помощью микродозаторных наконечников специальной конструкции // Иммунология. 1998; 19(4): 57- 59.

17. Щелканов М.Ю., Сахурия И.Б., Бурунова В.В. и др. Дегидрогеназная активность ВИЧ-инфицированных клеток при анализе результатов МТТ-теста // Иммунология. 1999; 20(1): 37-41.

18. Щелканов М.Ю. Эволюция высоковирулентного вируса гриппа А (H5N1) в экосистемах Северной Евразии (2005–2009 гг.). Дис. … д.б.н. М.: НИИ вирусологии им. Д.И. Ивановского РАМН, 2010; 488 с.

19. Щелканов М.Ю., Колобухина Л.В., Львов Д.К. Грипп: история, клиника, патогенез // Лечащий врач. 2011; (10): 33-38.

20. Щелканов М.Ю., Колобухина Л.В., Львов Д.К. Коронавирусы человека (Nidovirales, Coronaviridae): возросший уровень эпидемической опасности // Лечащий врач. 2013; 10: 49-54.

21. Щелканов М.Ю., Львов Д.К. Экология: история становления основных концепций // В сб.: Новые и возвращающиеся инфекции в системе биобезопасности Российской Федерации. М.: Издво Первого МГМУ им. И.М. Сеченова, 2014; 6-20.

22. Щелканов М.Ю., Аристова В.А., Чумаков В.М., Львов Д.К. Историография термина «природный очаг» // В сб.: Новые и возвращающиеся инфекции в системе биобезопасности Российской Федерации. М.: Изд-во Первого МГМУ им. И.М. Сеченова, 2014; 21-32.

23. Щелканов М.Ю., Ананьев В.Ю., Кузнецов В.В., Шуматов В.Б. Ближневосточный респираторный синдром: когда вспыхнет тлеющий очаг? // Тихоокеанский медицинский журнал. 2015; (2): 94-98.

24. Щелканов М.Ю., Ананьев В.Ю., Кузнецов В.В., Шуматов В.Б. Эпидемическая вспышка Ближневосточного респираторного синдрома в Республике Корея (май-июль 2015 г.): причины, динамика, выводы // Тихоокеанский медицинский журнал. 2015; (3): 89-93.

25. Щелканов М.Ю., Попова А.Ю., Дедков В.Г. и др. История изучения и современная классификация коронавирусов (Nidovirales: Coronaviridae) // Инфекция и иммунитет. 2020; 10(2): 221- 246. DOI: 10.15789/2220-7619-HOI-1412.

26. Щелканов М.Ю., Колобухина Л.В., Бургасова О.А. и др. COVID-19: этиология, клиника, лечение // Инфекция и иммунитет. 2020; 10(3): 421-445. DOI: 10.15789/2220-7619-CEC-1473.

27. Щелканов М.Ю., Дунаева М.Н., Москвина Т.В. и др. Каталог вирусов рукокрылых (2020) // Юг России: экология, развитие. 2020; 15(3): 6-30. DOI: 10.18470/1992‐1098‐2020‐3‐6‐30.

28. Щелканов М.Ю., Табакаева Т.В., Любченко Е.Н. и др. Рукокрылые: общая характеристика отряда. Владивосток: Изд-во ДВФУ, 2021; 130 с. DOI: 10.24866/7444-5119-6.

29. Щелканов М.Ю., Леонова Г.Н., Галкина И.В., Андрюков Б.Г. У истоков концепции природной очаговости // Здоровье населения и среда обитания. 2021; (5): 16-25. DOI: 10.35627/2219- 5238/2021-338-5-16-25.

30. Щелканов М.Ю., Табакаева Т.В., Щелканов Е.М. и др. Паукообразные-эктопаразиты рукокрылых. Владивосток: Изд-во ДВФУ, 2022; 126 с. DOI: 10.24866/7444-5377-0.

31. Щелканов М.Ю., Табакаева Т.В., Щелканов Е.М. и др. Насекомые-эктопаразиты рукокрылых. Владивосток: Изд-во ДВФУ, 2022; 242 с. DOI: 10.24866/7444-5404-3.

32. Щелканов М.Ю., Татонова Ю.В., Табакаева Т.В. и др. Эндопаразиты рукокрылых: нематоды. Владивосток: Изд-во ДФВУ, 2023; 112 с. DOI: 10.61726/5457.2024.48.27.001.

33. Щелканов М.Ю. Этиология COVID-19 // В кн.: COVID-19: от этиологии до вакцинопрофилактики. Руководство для врачей. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2023; 11-53.

34. Яковлев А.А., Шафигуллин А.В., Попов А.Ф., Щелканов М.Ю. Динамика эпидемического процесса COVID-19 и других ОРВИ на Российском Дальнем Востоке (2019-2023 гг.) // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2025; 24(1): 18-30. DOI: 10.31631/2073-3046-2025-24-1-18-30.

35. Bardella C., Tomlinson I., Pollard P.J. SDH mutations in cancer // Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Bioenergetics. 2011; 1807(11): 1432-1443. DOI: 10.1016/j.bbabio.2011.07.003.

36. Besednova N.N., Andryukov B.G., Zaporozhets T.S., et al. Molecular targets of brown algae phlorotannins for the therapy of inflammatory processes of various origins // Marine Drugs. 2022; 20(4): 243. DOI: 10.3390/md20040243.

37. Carabelli A.M., Peacock T.P., Thorne L.G., et al. SARS-CoV-2 variant biology: immune escape, transmission and fitness // Nat. Rev. Microbiol. 2023; 21(3): 162-177. DOI: 10.1038/s41579-022-00841-7.

38. Chavda V.P., Bezbaruah R., Deka K., et al. The Delta and Omicron variants of SARS-CoV-2: What we know so far // Vaccines (Basel). 2022; 10(11): 1926. DOI: 10.3390/vaccines10111926.

39. Han Y., Zhang H., Mu S., et al. Lactate dehydrogenase, an independent risk factor of severe COVID-19 patients: a retrospective and observational study // Aging. 2020; 12(12): 11245-11258. DOI: 10.18632/aging.103372.

40. Khotimchenko Yu.S., Shchelkanov M.Yu. Viruses of the Ocean: On the shores of the aqua incognita. Horizons of taxonomic diversity // Rus. J. Marine Biol. 2024; 50: 1-24. DOI: 10.1134/S106307402401005X.

41. Kontopodis E., Pierros V., Stravopodis D.J., Tsangaris G.T. Prediction of SARS-CoV-2 Omicron variant immunogenicity, immune escape and pathogenicity, through the analysis of spike protein-specific core unique peptides // Vaccines (Basel). 2022; 10(3): 357. DOI: 10.3390/vaccines10030357.

42. Manathunga S.S., Abeyagunawardena I.A., Dharmaratne S.D. A comparison of transmissibility of SARS-CoV-2 variants of concern // Virol. J. 2023; 20(1): 59. DOI: 10.1186/s12985-023-02018-x.

43. Poggiali E., Zaino D., Immovilli P., et al. Lactate dehydrogenase and C-reactive protein as predictors of respiratory failure in CoVID-19 patients // Clinica Chimica Acta. 2020; 509: 135-138. DOI: 10.1016/j.cca.2020.06.012.

44. Radhakrishnan N., Liu M., Idowu B., et al. Comparison of the clinical characteristics of SARSCoV-2 Delta (B.1.617.2) and Omicron (B.1.1.529) infected patients from a single hospitalist service // BMC Infect. Dis. 2023; 23(1): 747. DOI: 10.1186/s12879-023-08714-x.

45. Shchelkanov M.Y., Sakhuriya I.B., Burunova V.V., et al. Dehydrogenase activity of infected cells and biological properties of HIV-1 variants // Biochemistry. 1999; 64: 431-436.

46. Wu M.Y., Yao L., Wang Y.I., et al. Clinical evaluation of potential usefulness of serum lactate dehydrogenase (LDH) in 2019 novel coronavirus (COVID-19) pneumonia // Respiratory Research. 2020; 21(1): 1-6. DOI: 10.1186/s12931-020-01427-8.

47. Zhang X., Wu S., Wu B., et al. SARS-CoV-2 Omicron strain exhibits potent capabilities for immune evasion and viral entrance // Signal Transduct. Target Ther. 2021; 6(1): 430. DOI: 10.1038/s41392-021-00852-5