ВИРУС ШОТЛАНДСКОГО ЭНЦЕФАЛОМИЕЛИТА ОВЕЦ (ORTHOFLAVIVIRUS LOUPINGI) НА ЮГЕ РОССИЙСКОГО ДАЛЬНЕГО ВОСТОКА: РЕДКИЙ И ЗАБЫТЫЙ

В статье представлены результаты полногеномного секвенирования вирусного штамма L-178 (VGARus ID prim002112; GenBank ID PP882705), выделенного в 1991 г. в Надеждинском районе Приморского края от больного, у которого лихорадочное состояние развилось после прикрепления иксодового клеща. Филогенетический анализ показал принадлежность указанного сиквенса к вирусу шотландского энцефаломиелита овец, или Orthoflavivirus loupingi. Сопоставляя полученные данные с ранее опубликованной информацией о другом штамме этого вируса из Приморского края, LIV/Primorye/P-185/1991 (VGARus ID prim002110; GenBank ID KJ495985), формулируется рабочая гипотеза о существовании вторичного очага O. loupingi в долине нижнего течения реки Раздольная (Суйфун) – в этом случае, Приморский край является единственным регионом мира, где одновременно циркулируют одновременно три вируса из антигенного комплекса клещевого энцефалита.

1. Запорожец Т.С., Беседнова Н.Н., Калинин А.В. и др. 80 лет на страже биологической безопасности у восточных рубежей России // Здоровье населения и среда обитания. 2021; (5): 5-15. DOI: 10.35627/2219-5238/2021-338-5-5-15

2. Коренберг Э.И., Литвин В.Ю. Природная очаговость болезней: к 70-летию теории // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2010; (1): 5-9.

3. Леонова Г.Н., Беликов С.И., Кондратов И.Г. Новые патогенные вирусы природных очагов Приморья, выделенные за 80-летнюю историю института (обзор вирусологических исследований) // Здоровье населения и среда обитания. 2021(5): 26-32. DOI: 10.35627/2219-5238/2021-338-5-26-32

4. Львов Д.К., Дерябин П.Г., Аристова В.А. и др. Атлас распространения возбудителей природноочаговых вирусных инфекций на территории Российской Федерации. М.: Изд-во НПЦ ТМГ МЗ РФ, 2001; 192 с.

5. Львов Д.К., Альховский С.В., Щелканов М.Ю. и др. Генетическая характеристика вируса Повассан (POWV – Powassan virus), изолированного от клещей Haemaphysalis longicornis в Приморском крае, и двух штаммов вируса клещевого энцефалита (Flaviviridae, Flavivirus): Алма-Арасан (AAV – Alma-Arasan virus), изолированного от клещей Ixodes persulcatus в Казахстане, и Малышево (MALOV – Malyshevo virus), изолированного от комаров Aedes vexans nipponii в Хабаровском крае // Вопросы вирусологии. 2014; 59(5): 18-22.

6. Ляпина О.В., Громашевский В.Л., Прилипов А.Г. Организация генома вируса Карши (штамм LEIV-2247 UZ) и его филогенетические взаимоотношения с представителями рода Flavivirus // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2006; (4): 35-40.

7. Медицинская вирусология / Ред.: академик Д.К. Львов. М.: МИА, 2008; 655 с.

8. Руководство по вирусологии. Вирусы и вирусные инфекции человека и животных / Ред.: академик Д.К. Львов. М.: МИА, 2013; 1200 с.

9. Шутикова А.Л., Лубова В.А., Щелканов М.Ю. Генетическая характеристика штаммов вируса клещевого энцефалита из коллекции НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Г.П. Сомова Роспотребнадзора // Дальневосточный журнал инфекционной патологии. 2023; (45): 148-150.

10. Щелканов М.Ю., Громашевский В.Л., Львов Д.К. Роль эколого-вирусологического районирования в прогнозировании влияния климатических изменений на ареалы арбовирусов // Вестник РАМН. 2006; (2): 22-25.

11. Щелканов М.Ю., Львов Д.К. Экология: история становления основных концепций // В сб.: Новые и возвращающиеся инфекции в системе биобезопасности Российской Федерации. М.: Издво Первого МГМУ им. И.М. Сеченова, 2014; 6-20.

12. Щелканов М.Ю., Аристова В.А., Чумаков В.М., Львов Д.К. Историография термина «природный очаг» // В сб.: Новые и возвращающиеся инфекции в системе биобезопасности Российской Федерации. М.: Изд-во Первого МГМУ им. И.М. Сеченова, 2014; 21-32.

13. Щелканов М.Ю., Леонова Г.Н., Галкина И.В., Андрюков Б.Г. У истоков концепции природной очаговости // Здоровье населения и среда обитания. 2021; (5): 16-25. DOI: 10.35627/2219-5238/2021-338-5-16-25

14. Balseiro A., Royo L.J., Martinez C.P., et al. Louping ill in goats, Spain, 2011 // Emerg. Infect. Dis. 2012; 18(6): 976-978. DOI: 10.3201/eid1806.120220

15. Buxton D., Reid H.W. Experimental infection of red grouse with louping-ill virus (flavivirus group). II. Neuropathology // J. Comp. Pathol. 1975; 85(2): 231-235. DOI: 10.1016/0021-9975(75)90064-x

16. Gao G.F., Jiang W.R., Hussain M.H., et al. Sequencing and antigenic studies of a Norwegian virus isolated from encephalomyelitic sheep confirm the existence of louping ill virus outside Great Britain and Ireland // J. Gen. Virol. 1993; 74(1): 109-114. DOI: 10.1099/0022-1317-74-1-109

17. Jensen P.M., Skarphedinsson S., Semenov A. Densities of the tick Ixodes ricinus and coexistence of the louping ill virus and tick borne encephalitis on the island of Bornholm // Ugeskrift for Laeger. 2004; 166(26-31): 2563-2565.

18. Khotimchenko Yu.S., Shchelkanov M.Yu. Viruses of the Ocean: On the shores of the aqua incognita. Horizons of taxonomic diversity // Rus. J. Marine Biol. 2024; 50: 1-24. DOI: 10.1134/S106307402401005X

19. Leonova G.N., Kondratov I.G., Maystrovskaya O.S., et al. Louping ill virus (LIV) in the Far East // Arch. Virol. 2015; 160(3): 663-673. DOI: 10.1007/s00705-014-2310-1

20. Lvov D.K., Shchelkanov M.Yu., Alkhovsky S.V., Deryabin P.G. Zoonotic viruses of Northern Eurasia. Taxonomy and Ecology. Academic Press, 2015; 452 p.

21. MacLeod J., Gordon W.S. Studies in Louping-ill (An encephalomyelitis of sheep). II. Transmission by the sheep tick, Ixodes ricinus L. // J. Comp. Pathol. Ther. 1932. 45: 240-252.

22. Pool W.A., Brownlee A., Wilson D.R. The Etiology of "Louping-ill" // J. Comp. Path. Ther. 1930; 43: 253-290. DOI: 10.1016/S0368-1742(30)80026-2

23. Reid H.W. Experimental infection of red grouse with louping-ill virus (flavivirus group). I. The viraemia and antibody response // J. Comp. Pathol. 1975; 85(2): 223-229. DOI: 10.1016/0021-9975(75)90063-8

24. Rivers T.M., Schwentker F.F. Louping ill in man // J. Exp. Med. 1934; 59(5): 669-685. DOI: 10.1084/jem.59.5.669