АНТИ-SARS-COV-2 АКТИВНОСТЬ РАЗЛИЧНЫХ ТИПОВ КАРРАГИНАНОВ ИЗ КРАСНЫХ ВОДОРОСЛЕЙ (RHODOPHYTA) ДАЛЬНЕВОСТОЧНЫХ МОРЕЙ

Разнообразие структурных типов каррагинанов (КРГ) – сульфатированных полисахаридов красных водорослей (Rhodophyta) – определяет их широкую биологическую активность. Анти-SARS-CoV-2 активность различных типов КРГ (κ, λ, (κ+λ), κ/β), выделенных из Chondrus armatus и Tichocarpus crinitus тихоокеанского побережья России, была изучена с помощью методов ингибирования цитопатогенного действия вируса в МТТ-тесте и полимеразной цепной реакции в режиме реального времени с обратной транскрипцией. Наибольшую активность продемонстрировал каппа-каррагинан из C. armatus, эффективно ингибируя ранние стадии взаимодействия SARS-CoV-2 с клеткой-мишенью.

1. Акимкин В.Г., Попова А.Ю., Хафизов К.Ф. и др. COVID-19: эволюция пандемии в России. Сообщение II. Динамика циркуляции геновариантов вируса SARS-CoV-2 // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2022; 99(4): 381-396. DOI: 10.36233/0372-9311-295

2. Беседнова Н.Н., Звягинцева Т.Н., Андрюков Б.Г. и др. Сульфатированные полисахариды морских водорослей как потенциальные средства профилактики и терапии гриппа и COVID19 // Антибиотики и химиотерапия. 2021; 66(7-8): 50-66. DOI: 10.37489/0235-2990-2021-66-7-8-50-66

3. Бурцева Е.И., Львов Д.К., Щелканов М.Ю. и др. Особенности социркуляции вирусов гриппа в постпандемический период 2010-2011 гг. по итогам деятельности Центра экологии и эпидемиологии гриппа ФГУ «НИИ вирусологии им. Д.И. Ивановского» Минздравсоцразвития России // Вопросы вирусологии. 2012; 57(1): 20-28.

4. Грибова В.В., Окунь Д.Б., Шалфеева Е.А. и др. Облачный сервис для дифференциальной клинической диагностики острых респираторных вирусных заболеваний (в том числе – связанных с особо опасными коронавирусами) методами искусственного интеллекта // Якутский медицинский журнал. 2020; (2): 44-47. DOI: 10.25789/YMJ.2020.70.13

5. Запорожец Т.С., Беседнова Н.Н., Калинин А.В. и др. 80 лет на страже биологической безопасности у восточных рубежей России // Здоровье населения и среда обитания. 2021; (5): 5-15. DOI: 10.35627/2219-5238/2021-338-5-5-15

6. Колобухина Л.В., Щелканов М.Ю., Меркулова Л.Н. и др. Этиотропная терапия гриппа: уроки последней пандемии // Вестник РАМН. 2011; (5): 35-40.

7. Шестопалов А.М., Кононова Ю.В., Гаджиев А.А. и др. Биоразнообразие и эпидемический потенциал коронавирусов (Nidovirales: Coronaviridae) рукокрылых // Юг России: экология, развитие. 2020; 15(2): 17-34. DOI: 10.18470/1992-1098-2020-2-17-34

8. Щелканов Е.М. Электризационная гипотеза отсутствия вшей (Anoplura Leach, 1815) у рукокрылых (Chiroptera Blumenbach, 1779) // Юг России: экология, развитие. 2021; 16(2): 6-16. DOI: 10.18470/1992‐1098‐2021‐2‐6‐16

9. Щелканов М.Ю., Сахурия И.Б., Полякова Е.Б. и др. Повышение качества МТТ-метода с помощью микродозаторных наконечников специальной конструкции // Иммунология. 1998; 19(4): 57-59.

10. Щелканов М.Ю., Сахурия И.Б., Бурунова В.В. и др. Дегидрогеназная активность ВИЧ-инфицированных клеток при анализе результатов МТТ-теста // Иммунология. 1999; 20(1): 37-41.

11. Щелканов М.Ю., Колобухина Л.В., Львов Д.К. Коронавирусы человека (Nidovirales, Coronaviridae): возросший уровень эпидемической опасности // Лечащий врач. 2013; 10: 49-54.

12. Щелканов М.Ю., Ананьев В.Ю., Кузнецов В.В., Шуматов В.Б. Эпидемическая вспышка Ближневосточного респираторного синдрома в Республике Корея (май-июль 2015 г.): причины, динамика, выводы // Тихоокеанский медицинский журнал. 2015; (3): 89-93.

13. Щелканов М.Ю., Попова А.Ю., Дедков В.Г. и др. История изучения и современная классификация коронавирусов (Nidovirales: Coronaviridae) // Инфекция и иммунитет. 2020; 10(2): 221-246. DOI: 10.15789/2220-7619-HOI-1412

14. Щелканов М.Ю., Колобухина Л.В., Бургасова О.А. и др. COVID-19: этиология, клиника, лечение // Инфекция и иммунитет. 2020; 10(3): 421-445. DOI: 10.15789/2220-7619-CEC-1473

15. Щелканов М.Ю., Дунаева М.Н., Москвина Т.В. и др. Каталог вирусов рукокрылых (2020) // Юг России: экология, развитие. 2020; 15(3): 6-30. DOI: 10.18470/1992‐1098‐2020‐3‐6‐30

16. Щелканов М.Ю., Табакаева Т.В., Любченко Е.Н. и др. Рукокрылые: общая характеристика отряда. Владивосток: Изд-во ДВФУ, 2021; 130 с. DOI: 10.24866/7444-5119-6

17. Щелканов М.Ю., Табакаева Т.В., Щелканов Е.М. и др. Паукообразные-эктопаразиты рукокрылых. Владивосток: Изд-во ДВФУ, 2022; 126 с. DOI: 10.24866/7444-5377-0

18. Щелканов М.Ю., Табакаева Т.В., Щелканов Е.М. и др. Насекомые-эктопаразиты рукокрылых. Владивосток: Изд-во ДВФУ, 2022; 242 с. DOI: 10.24866/7444-5404-3

19. Щелканов М.Ю., Татонова Ю.В., Табакаева Т.В. и др. Эндопаразиты рукокрылых: нематоды. Владивосток: Изд-во ДФВУ, 2023; 112 с. DOI: 10.61726/5457.2024.48.27.001

20. Щелканов М.Ю. Этиология COVID-19 // В кн.: COVID-19: от этиологии до вакцинопрофилактики. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2023; 11-53.

21. Ahmadi A., Moghadamtousi S.Z., Abubakar S., et al. Antiviral potential of algae polysaccharides isolated from marine sources: A review // BioMed Res. Int. 2015; 825203. DOI: 10.1155/2015/825203

22. Anastyuk S.D., Barabanova A.O., Correc G., et al. Analysis of structural heterogeneity of kappa/beta-carrageenan oligosaccharides from Tichocarpus crinitus by negative-ion ESI and tandem MALDI mass spectrometry // Carbohydr. Polym. 2011; 86: 546–554. DOI: 10.1016/j.carbpol.2011.04.081

23. Andrew M., Jayaraman G. Marine sulfated polysaccharides as potential antiviral drug candidates to treat Corona Virus disease (COVID-19) // Carbohydr. Res. 2021; 505: 108326. DOI: 10.1016/j.carres.2021.108326

24. Dong M., Galvan Achi J.M., Du R., et al. Development of SARS-CoV-2 entry antivirals // Cell Insight. 2024; 3(1): 100144. DOI: 10.1016/j.cellin.2023.100144

25. Ferreira P., Soares R., Lopez-Fernandez H., et al. Multiple lines of evidence support 199 SARSCoV-2 positively selected amino acid sites // Int. J. Mol. Sci. 2024; 25(4): 2428. DOI: 10.3390/ijms25042428

26. Hu X., Xing Y., Ni W., et al. Environmental contamination by SARS-CoV-2 of an imported case during incubation period // Sci. Total Environ. 2020; 742: 140620. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2020.140620

27. Kalitnik A.A., Marcov P.A., Anastyuk S.D., et al. Gelling polysaccharide from Chondrus armatus and its oligosaccharides: The structural peculiarities and anti-inflammatory activity // Carbohydr. Polym. 2015; 115: 768-775. DOI: 10.1016/j.carbpol.2014.04.070

28. Krylova N.V., Kravchenko A.O., Iunikhina O.V., et al. Influence of the structural features of carrageenans from red algae of the Far Eastern seas on their antiviral properties // Mar. Drugs. 2022; 20: 60. DOI: 10.3390/md20010060

29. Kuznetsova T.A., Krylova N.V., Kokoulin M.S., et al. Polysaccharides from marine bacteria and their anti-SARS-CoV-2 activity // Microbiol. Res. 2025; 16: 102. DOI: 10.3390/microbiolres16050102

30. Mukherjee S., Ghosh K., Hahn F., et al. Chemically sulfated polysaccharides from natural sources: Assessment of extraction-sulfation efficiencies, structural features and antiviral activities // Int. J. Biol. Macromol. 2019; 136: 521-530. DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2019.05.005

31. Rahmani D., Jafari A., Kesharwani P., Sahebkar A. Molecular targets in SARS-CoV-2 infection: An update on repurposed drug candidates // Pathol. Res. Pract. 2024; 263: 155589. DOI: 10.1016/j.prp.2024.155589

32. Shchelkanov M.Y., Sakhuriya I.B., Burunova V.V., et al. Dehydrogenase activity of infected cells and biological properties of HIV-1 variants // Biochemistry. 1999; 64: 431-436.

33. Wang W., Wang S.X., Guan H.S. The antiviral activities and mechanisms of marine polysaccharides: An overview // Mar. Drugs. 2012; 10: 2795-2816. DOI: 10.3390/md10122795

34. Yermak I.M., Kim Y.H., Titlynov E.A., et al. Chemical structure and gel properties of carrageenans from algae belonging to the Gigartinaceae and Tichocarpaceae, collected from the Russian Pacific coast // J. Appl. Phycol. 1999; 11: 41-48. DOI: 10.1023/A:1008071925884

35. Yermak I.M., Khotimchenko Y.S. Chemical properties, biological activities and applications of carrageenan from red algae // In: Recent Advances in Marine Biotechnology. Boca Raton (USA): CRC Press, 2003; 9: 207-255.