Возбудители иксодовых клещевых боррелиозов: видовое разнообразие и методы идентификации (обзор литературы)
Аннотация
Значительная часть территории Российской Федерации эндемична по иксодовым клещевым боррелиозам, случаи заболеваний регистрируются в 77 административных территориях страны. Информация о географическом распространении различных видов комплекса Borrelia burgdorferi sensu lato имеет важное эпидемиологическое значение, так как различные геновиды связаны с определенными клиническими проявлениями заболеваний. Внутри комплекса Borrelia burgdorferi sensu lato выделяют по меньшей мере 22 вида, десять из которых являются патогенными для человека. В настоящей статье приведен обзор видового состава, генетического разнообразия и методов идентификации возбудителей иксодовых клещевых боррелиозов.
Об авторах
Н. В. Белкина
ФБУН Хабаровский НИИ эпидемиологии и микробиологии Роспотребнадзора
Россия
Россия
Белкина Надежда Владимировна – младший научный сотрудник лаборатории клещевого энцефалита и других природно-очаговых инфекций.
Хабаровск
А. Г. Драгомерецкая
ФБУН Хабаровский НИИ эпидемиологии и микробиологии Роспотребнадзора
Россия
Россия
Хабаровск
О. Е. Троценко
ФБУН Хабаровский НИИ эпидемиологии и микробиологии Роспотребнадзора
Россия
Россия
Хабаровск
Список литературы
1. Антыкова Л.П., Коренберг Э.И., Сергеева М.Я. и др. Эпидемиология болезни Лайма в Санкт-Петербурге // Проблемы клещевых боррелиозов. - М: Медицина, 1993. – С. 112-121.
2. Арумова Е.А., Воронцова Т.В. Клещевой боррелиоз (болезнь Лайма) в России // Дезинфекционное дело. – 2000. – T. 2. – С. 45-47.
3. Безбородов Н.Г., Половинкина Н.А., Попова С.П. Клинические особенности локализованной стадии клещевого боррелиоза (болезнь Лайма) // Земский врач. – 2013. − № 3. – С. 32 – 35.
4. Бессолицына Е.А., Волков С.А., Бердинских И.С. и др. Анализ зараженности бактериями рода Borrelia клещей, собранных на территории Кировской области // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. – 2013. – Т. 15, № 3. – С. 1088-1091.
5. Бисенбай А.О., Жигайлов А.В., Перфильева Ю.В. и др. Эпидемиология и молекулярно-генетическая характеристика возбудителей Лайм-боррелиоза, циркулирующих в популяции клещей на территории Алматинской области Республики Казахстан // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. – 2020. – Т. 97, № 6. – С. 535-545.
6. Генетическая структура популяций боррелий на территории России: отчет о НИР (заключит.) // Урал. фед. ун-т.; рук. Ковалев С.Ю., исполн. Мухачева Т.А. – Екатеринбург, 2013. – 16 с.
7. Горелова Н.Б., Коренберг Э.И., Ковалевский Ю.В. и др. Изоляция боррелий от клеща Ixodes trianguliceps (Ixodidae) и возможное значение этого вида в эпизоотологии иксодовых клещевых боррелиозов // Паразитология. – 1996. – Т. 30, № 1. – С. 13-18.
8. Горелова Н.Б., Коренберг Э.И., Постик Д. и др. Первая изоляция Borrelia burgdorferi sensu stricto в России // Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. – 2001. – № 4. – С. 10-12.
9. Горелова Н.Б., Коренберг Э.И., Фадеева И.А. и др. Генетическая характеристика патогенных для человека боррелий, изолированных от клещей Ixodes trianguliceps Bir. и Ixodes pavlovskyi Pоm. // Медицинская паразитология и паразитарные болезни. – 2005. – № 2. – С. 9-12.
10. Горелова Н.Б., Коренберг Э.И., Филиппова Н.А., Постик Д. Первая изоляция патогенных для человека боррелий от клещей Ixodes pavlovskyi Pom. // ДАН. – 2001. – Т. 378, № 4. – С. 558-559.
11. Довнар-Запольская О.Н., Манкевич Р.Н. Клещевой боррелиоз у детей. - Минск: БГМУ, 2017. – 72 с.
12. Егембердиева Р.А., Токсанбаева К.Н., Дуйсенова А.К., Ермуханова Н.Т. Клинические проявления хронических форм клещевого боррелиоза в Восточно-Казахстанской области // Вестник Казахского национального медицинского университета. – 2013. − № 2. – С. 89–92.
13. Захарычева Т.А. Клещевой энцефалит в Хабаровском крае: вчера, сегодня, завтра: Библиотека инфекционной патологии. – Хабаровск, 2013. – № 36. – 248 с.
14. Информационный сборник статистических и аналитических материалов. Часть 2. Инфекционная заболеваемость в Российской Федерации в 2001–2002 гг.- М.: ФЦ ГСЭН, 2003. – 167 с.
15. Карпов И.А., Соловей Н.В., Анисько Л.А., Щерба В.В. и др. Лайм-боррелиоз: вопросы диагностики и рациональной этиотропной терапии. // Клиническая инфектология и паразитология. – 2015. − № 3. – С. 64–80.
16. Клинические рекомендации (протокол лечения) оказания медицинской помощи детям больным болезнью лайма. - ФГБУ НИИДИ ФМБА России, 2015. – 74 с.
17. Клинические рекомендации Болезнь Лайма. - Некоммерческое партнерство «Национальное научное общество инфекционистов» (ННОИ), 2019. – 50 с.
18. Козлова И.В., Дорощенко Е.К., Лисак О.В. и др. Видовое и генетическое разнообразие возбудителей клещевых инфекций на территории Восточной Сибири // Бюллетень ВСНЦ СО РАМН. – 2012. − №2. – С. 75-82.
19. Коренберг Э. И., Помелова В. Г., Осин Н. С. Природноочаговые инфекции, передающиеся иксодовыми клещами / под ред. А.Л. Гинцбурга. – Москва, 2013. – 463 с.
20. Коренберг Э.И. Иксодовые клещевые боррелиозы: основные итоги изучения и профилактики в России: Материалы научно-практической конференции «Клещевые боррелиозы». – Ижевск. – 2002. – С. 165–172.
21. Коренберг Э.И. Инфекции группы Лайм боррелиоза — иксодовые клещевые боррелиозы в России // Медицинская паразитология и паразитарные болезни. – 1996. − №3. − С.14-18.
22. Коренберг Э.И. Таксономия, филогенетические связи и области формообразования спирохет рода Borrelia, передающихся иксодовыми клещами // Успехи современной биологии. – 1996. – Т. 116, №4. – С. 389-406.
23. Коренберг Э.И., Нефедова В.В., Фадеева И.А., Горелова Н.Б. Основные итоги генотипирования боррелий в России // Бюллетень сибирской медицины (приложение 1). – 2006. – С. 87-92.
24. Крючечников В.Н., Коренберг Э.И., Щербаков С.В. Идентификация боррелий, изолированных в СССР от клещей Ixodes persulcatus Schulze // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. – 1987. – № 12. – С. 41-44.
25. Лесняк О.М., Беликов Е.С. О классификации Лайм-боррелиоза (Лаймской болезни) // Терапевтический архив. – 1995. – № 11. – С. 49-51.
26. Лобзин Ю.В., Рахманова А.Г., Антонов В.С. и др. Эпидемиология, этиология, клиника, диагностика, лечение и профилактика иксодовых клещевых боррелиозов: Рекомендации для врачей. – Санкт-Петербург, 2000. – 78 с.
27. Лобзин Ю.В., Усков А.Н., Козлов С.С. Лайм-боррелиоз (иксодовые клещевые боррелиозы). - СПб: «Издательство Фолиант», 2000. – 160 с.
28. Мухачева Т.А. Молекулярно-генетическая характеристика возбудителей иксодового клещевого боррелиоза в природных очагах на территории России: Дис. … канд. биолог. наук. – Екатеринбург, Урал. фед. ун-т. – 2015. – 121 с.
29. Нефедова В.В., Тетерин В.Ю., Коренберг Э.И. Изоляция возбудителя иксодового клещевого боррелиоза из крови больных // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. – 2009. – №. 1. – С. 63-66.
30. «О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2018 году»: Государственный доклад. - М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, 2019. – 254 с.
31. «О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2021 году»: Государственный доклад. - М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, 2022. – 340 с.
32. Природная очаговость болезней: Исследования института Гамалея РАМН / Под ред. проф. Э.Н. Коренберга. – М.: Русаки, 2003. – С. 99–121.
33. Рудакова С.А., Матущенко Е.В., Якименко В.В. и др. Изучение возможной трансовариальной и трансфазовой передачи боррелий клещами Dermacentor reticulatus (Ixodidae) // Паразитология. – 2005. – Т. 39, № 5. – С. 427-432.
34. Рудакова С.А., Пеньевская Н.А., Блох А.И и др. Обзор эпидемиологической ситуации по иксодовым клещевым боррелиозам в Российской Федерации в 2010 – 2020 гг. и прогноз на 2021 г. // Проблемы особо опасных инфекций. – 2021. − №2. – С. 52-61.
35. Рудакова С.А., Пеньевская Н.А., Блох А.И. и др. Эпидемиологическая ситуация по иксодовым клещевым боррелиозам в Российской Федерации в 2019 г. в сравнении с периодом 2002-2018 гг. // Проблемы особо опасных инфекций. – 2020. − № 3. – С.131-138
36. Рудакова С.А., Теслова О.Е., Канешова Н.Е. и др. Геновидное разнообразие боррелий в иксодовых клещах на территории юга Западной Сибири // Проблемы особо опасных инфекций. – 2019. − №4. – С. 92-96.
37. Скрипченко Н. В., Усков А. Н., Иванова М. В., Вильниц А. А. Клинические рекомендации (протокол лечения) оказания медицинской помощи детям больным болезнью лайма. - СПб: ФГБУ НИИДИ ФМБА России, 2015. – 74 с.
38. Соловей Н.В. Лайм-боррелиоз: Учебно-методическое пособие. – Минск: БГМУ, 2015. – 31 с.
39. Фоменко Н.В., Романова Е.В., Караваева Ю.Ю. и др. Разнообразие Borrelia burgdorferi sensu lato в природных очагах Новосибирской области // Бюллетень сибирской медицины (приложение 1). – 2006. – С. 93-98.
40. Хаммадов Н.И., Хамидуллина А.И. Подбор генетических маркеров для выявления ДНК патогенных боррелий // Проблемы особо опасных инфекций. – 2022. − № 2. – С. 134-141.
41. Ястребов В.К., Рудаков Н.В., Шпынов С.Н. Трансмиссивные клещевые природно-очаговые инфекции в Российской Федерации: тенденции эпидемического процесса, актуальные вопросы профилактики // Сибирский медицинский журнал. – 2012. − №4. – С. 91-93.
42. Adeolu M., Gupta R.S. A phylogenomic and molecular marker based proposal for the division of the genus Borrelia into two genera: the emended genus Borrelia containing only the members of the relapsing fever Borrelia, and the genus Borreliella gen. nov. containing the members of the Lyme disease Borrelia (Borrelia burgdorferi sensu lato complex) // Antonie Van Leewenhoek. – 2014. – Vol. 105. – P. 1049-1072.
43. Barbour A. Borreliaceae // Bergey’s Manual of Systematics of Achaea and Bacteria. – 2018. – Vol. 1. – P. 1-22.
44. Bobe J.R., Jutras B.L., Horn E.J. et al. Recent Progress in Lyme Disease and Remaining Challenges // Front Med (Lausanne). – 2021. – Vol. 8. – P. 2296-2358.
45. Borgoyakov V.Yu, Fomenko N.V., Panov V.V., Chikova E.D. Infestation of Taiga Ticks with Borrelias in the Territory of Novosibirsk Scientific Center (Siberian Branch, Russian Academy of Sciences) // Entomological Review. – 2011. – Vol. 91, № 3. – P. 396–404.
46. Branda J.A., Steere A.C. Laboratory Diagnosis of Lyme Borreliosis // Clin Microbiol Rev. – 2021. − Vol. 34, № 2. – Р.369-385.
47. Burgdorfer W., Barbour A.G., Hayes S.F. et al. Lyme Disease – a Tick-Borne Spirochetosis? // Science. – 1982. −Vol. 216, № 4552. – P. 1317-1319.
48. Coipan E.C., Jahfari S., Fonville M. et al. Imbalanced presence of Borrelia burgdorferi s.l. multilocus sequence types in clinical manifestations of Lyme borreliosis // Infect. Genet. Evol. – 2016. − № 42. – P.66–76.
49. Comstedt P. Hanner M., Schuler W. et al. Design and development of a novel vaccine for protection against Lyme borreliosis // PLoS One. – 2014. – Vol. 9, № 11. – P. 1-12.
50. Crowder C.D., Matthews H.E., Schutzer S. et al. Genotypic variation and mixtures of Lyme Borrelia in Ixodes ticks from North America and Europe// PLoS One. – 2010. − Vol. 5, № 5. – P.645-670.
51. Cutler S.J. Relapsing fever borreliae: a global review // Clim Lab Med. – 2015. – Vol. 35. – P. 847-865.
52. Demaerschalck I., Messaoud A. Ben, Kesel M. De et al. Simultaneous presence of different Borrelia burgdorferi genospecies in biological fluids of Lyme disease patients // J Clin Microbiol. – 1995. – Vol. 33, № 3. – P. 602-608.
53. Drancourt M., Roux V., Dang L.V. et al. Genotyping, Orientalis-like Yersinia pestis, and plague pandemics // Emerging Infectious Diseases. – 2004. –Vol. 10, № 9. – P. 1585-1592.
54. Duneau D., Boulinier T., Gomez-Diaz E. et al. Prevalence and diversity of Lyme borreliosis bacteria in marine birds // Infect Genet Evol. – 2008. – Vol. 8, № 3. – P. 352-359.
55. Earnhart, C.G., Buckles E.L., Dumler J.S., Marconi R.T. Demonstration of OspC type diversity in invasive human lyme disease isolates and identification of previously uncharacterized epitopes that define the specificity of the OspC murine antibody response // Infect Immun. – 2005. – Vol. 73, № 12. – P. 7869-7877.
56. Eisen L, Lane RS. Vectors of Borrelia burgdorferi sensu lato // Lyme borreliosis: biology, epidemiology and control. – Oxon, UK: CABI Publishing. – 2002. − P. 91-115.
57. Eisen L. Vector competence studies with hard ticks and Borrelia burgdorferi sensu lato spirochetes: a review // Ticks Tick Borne Dis. – 2020. − Vol. 11, №3. – P. 1877-1959.
58. Eisen L., Dolan MC. Evidence for personal protective measures to reduce human contact with blacklegged ticks and for environmentally based control methods to suppress host-seeking blacklegged ticks and reduce infection with Lyme disease spirochetes in tick vectors and rodent reservoirs // J. Med. Entomol. – 2016. – Vol. 53. − P. 1063–1092.
59. Eisen L., Eisen RJ. Critical evaluation of the linkage between tick-based risk measures and the occurrence of Lyme disease cases // J. Med. Entomol. – 2016. –Vol. 7. – P. 1230–1235.
60. Elbir H., Gimenez G., Sokhna C. et al. Multispacer sequence typing relapsing fever Borreliae in Africa // PLoS Negl Trop Dis. – 2012. – Vol. 6, № 6. – P. 760-779.
61. Feil E.J., Li B.C., Aanensen D.M., Hanage W.P. et al. eBURST: inferring patterns of evolutionary descent among clusters of related bacterial genotypes from multilocus sequence typing data // Journal of Bacteriology. – 2004. – Vol. 186, № 5. – P. 1518-1530.
62. Fish D., Des Vignes F., Schwartz I. et al. International Scientific Conference «Tick-borne Viral, rickets and bacteriological infections» // 2-nd: Abstract Book. – Irkutsk. – 1996. – P. 65-57
63. Franke J., Hildebrandt A., Dorn W. Exploring gaps in our knowledge on Lyme borreliosis spirochaetes-updates on complex heterogeneity, ecology, and pathogenicity // Ticks Tick Borne Dis. – 2013. – Vol. 4, № 2. – P. 11-25.
64. Fukunaga M., Hamase A., Okada K., Nakao M. Borrelia tanukii sp. nov. and Borrelia turdae sp. nov. found from ixodid ticks in Japan: rapid species identification by 16S rRNA gene-targeted PCR analysis // Microbiol Immunol. – 1996. – Vol. 40, № 11. – P. 877-881.
65. Gern L, Douet V., Lopez Z. et al. Diversity of Borrelia genospecies in Ixodes ricinus ticks in a Lyme borreliosis endemic area in Switzerland identified by using new probes for reverse line blotting // Ticks and Tick-borne Diseases. – 2010. – Vol. 1, № 1. – P. 23-29.
66. Golde W.T., Robinson-Dunn B., Stobierski M.G. et al. Culture-confirmed reinfection of a person with different strains of Borrelia burgdorferi sensu stricto// J. Clin. Microbiol. – 1998. – Vol. 36, №4. – P. 1015–1019.
67. Hanincova K., Mukherjee P., Ogden N.H. et al. Multilocus sequence typing of Borrelia burgdorferi suggests existence of lineages with differential pathogenic properties in humans // PLoS One. – 2013. – Vol. 8, № 9. – P. 1126-1143.
68. Hanincova K., Schäfer S., Etti S. et al. Association of Borrelia afzelii with rodents in Europe // Parasitology. – 2003. – Vol. 126. – P. 11-20.
69. Hanincova K., Taragelova V., Koci J. et al. Association of Borrelia garinii and B. valaisiana with songbirds in Slovakia // Applied and Environmental Microbiology. – 2003. – Vol. 69. – P. 2825-2830.
70. Huegli D., Hu C.M., Humair P.F. et al. Apodemus species mice are reservoir hosts of Borrelia garinii OspA serotype 4 in Switzerland // J Clin Microbiol. – 2002. – Vol. 40, № 12. – P. 4735-4737.
71. Ivanova L.B., Tomova A., González-Acuña D. et al. Borrelia chilensis, a new member of the Borrelia burgdorferi sensu lato complex that extends the range of this genospecies in the Southern Hemisphere // Environ. Microbiol. – 2014. −, Vol. 16, №4. – P. 1069–1080.
72. Jahfari S., Krawczyk A., Coipan E. C. et al. Enzootic origins for clinical manifestations of Lyme borreliosis // Infection, Genetics and Evolution. – 2017. − Vol. 49. – P. 48-54.
73. Johnson R. C., Schmid G. P., Hyde F. W. et al. Borrelia burgdorferi sp. nov.: etiological agent of Lyme disease // Int J Syst Bacteriol. – 1984. – Vol. 34. – P. 496-497.
74. Jones K.L., Glickstein L.J., Damle N. et al. Borrelia burgdorferi genetic markers and disseminated disease in patients with early Lyme disease // J Clin Microbiol. – 2006. –Vol. 44, № 12. – P. 4407-4413.
75. Kilpatrick A.M., Dobson A.D.M., Levi T. et al. Lyme disease ecology in a changing world: consensus, uncertainty and critical gaps for improving control // Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. – 2017. − Vol. 372, № 1722. – P. 2016-2117.
76. Korenberg E.I. The problem of Lyme disease in Russia // Problems of Tick-Borne Borrelioses. – Moscow. – 1993. – P. 22— 30.
77. Korenberg E.I., Gorelova N.B., Kovalevsky Yu.V. Ecology of Borrelia burgdorferi sensu lato in Russia // Lyme Borreliosis Epidemiology and Control. Oxford. – 2002. – P. 175—200.
78. Korenberg E.I., Nefedova V.V., Romanenko V.N., Gorelova N.B. The tick Ixodes pavlovskyi as a host of spirochetes pathogenic for humans and its possible role in the epizootiology and epidemiology of borrelioses // Vector Borne Zoonotic Dis. – 2010. –Vol. 10, № 5. –– P. 453-458.
79. Kurtenbach K., De Michelis S., Etti S. et al. Host association of Borrelia burgdorferi sensu latothe key role of host complement // Trends Microbiol. – 2002. –Vol. 10, № 2. – P. 74-79.
80. Kurtenbach K., De Michelis, S., Sewell H.-S. et al. The key roles of selection and migration in the ecology of Lyme borreliosis // International journal of medical microbiology. – 2002. – Vol. 291. – P. 152-154.
81. Kurtenbach K., Hanincova K., Tsao J. I. et al. Fundamental processes in the evolutionary ecology of Lyme borreliosis // Nature Reviews Microbiology. – 2006. – Vol. 4. – P. 660-669.
82. Lesnyak O., Laikovskaya E., Kufko I. et al. Clinical Features of Lyme Borreliosis in the Middle Urals and Distribution of Borrelia burgdorferi sensu lato Species in Local Ixodes persulcatus Ticks // Zentralblatt für Bakteriologie. – 1998. –Vol. 288, №1. – P. 111-119.
83. Liang F.T., Jacobs M.B., Bowers L.C. et al. An immune evasion mechanism for spirochetal persistence in Lyme borreliosis // J Exp Med. – 2002. –Vol. 195, № 4. – P. 415-422.
84. Maiden M.C., Bygraves J.A., Feil E. et al. Multilocus sequence typing: a portable approach to the identification of clones within populations of pathogenic microorganisms // Proc Natl Acad Sci U S A. – 1998. –Vol. 95, № 6. – P. 3140-3145.
85. Marconi R.T., Hohenberger S., Jauris-Heipke S. et al. Genetic analysis of Borrelia garinii OspA serotype 4 strains associated with neuroborreliosis: evidence for extensive genetic homogeneity // J Clin Microbiol. – 1999. –Vol. 37, № 12. – P. 3965-3970.
86. Margos G., Gatewood A.G., Aanensen D.M. et al. MLST of housekeeping genes captures geographic population structure and suggests a European origin of Borrelia burgdorferi // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. – 2008. – Vol. 105. – P. 8730-8735
87. Margos G., Lane R.S., Fedorova N. et al. Borrelia bissettiae sp. nov. and Borrelia californiensis sp. nov. prevail in diverse enzootic transmission cycles // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. – 2016. − Vol. 66, №3. – P.1447–1452.
88. Margos G., Vollmer S.A., Ogden N.H., Fish D. Population genetics, taxonomy, phylogeny and evolution of Borrelia burgdorferi sensu lato // Infect Genet Evol. – 2011. –Vol. 11, № 7. – P. 1545-1563.
89. Margos G., Vollmer S.A., Cornet M. et al. A new Borrelia species defined by multilocus sequence analysis of housekeeping genes // Appl Environ Microbiol. – 2009. –Vol. 75, № 16. – P. 5410-5416.
90. Masuzawa T. Terrestrial distribution of the Lyme borreliosis agent Borrelia burgdorferi sensu lato in East Asia // Jpn J Infect Dis. – 2004. –Vol. 57, № 6. – P. 229-235.
91. Mukhacheva T.A., Kovalev S.Y. Borrelia spirochetes in Russia: Genospecies differentiation by real-time PCR // Ticks and Tick-borne Diseases. – 2014. – Vol.5. – P. 722-726.
92. Portnoi D., Sertour N., Ferquel E. et al. A single-run, real-time PCR for detection and identification of Borrelia burgdorferi sensu lato species, based on the hbb gene sequence // FEMS Microbiol Lett. – 2006. –Vol. 259, № 1. – P. 35-40.
93. Postic D., Korenberg E., Gorelova N., et al. Borrelia burgdorferi sensu lato in Russia and neighbouring countries: high incidence of mixed isolates // Res Microbiol. – 1997. –Vol. 148, № 8. – P. 691-702.
94. Postic D., Assous M.V., Grimont P.A. et al. Diversity of Borrelia burgdorferi sensu lato evidenced by restriction fragment length polymorphism of rrf (5S)-rrl (23S) intergenic spacer amplicons // Int J Syst Bacteriol. – 1994. –Vol. 44, № 4. – P. 743-752.
95. Poupon M.A., Lommano E., Humair P.F. et al. Prevalence of Borrelia burgdorferi sensu lato in ticks collected from migratory birds in Switzerland // Applied and environmental microbiology. – 2006. –Vol. 72, № 1. – P. 976-979.
96. Pritt B.S., Respicio-Kingry L.B., Sloan L.M. et al. Borrelia mayonii sp. nov., a member of the Borrelia burgdorferi sensu lato complex, detected in patients and ticks in the upper midwestern United States // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. – 2016. – Vol. 66, № 11. – P. 4878–4880.
97. Rar V.A., Fomenko N.V., Dobrotvorsky A.K. et al. Tickborne pathogen detection, Western Siberia, Russia // Emerg Infect Dis. – 2005. –Vol. 11, № 11. –– P. 1708-1715.
98. Rauter C., Hartung T. Prevalence of Borrelia burgdorferi sensu lato genospecies in Ixodes ricinus ticks in Europe: a metaanalysis // Appl Environ Microbiol. – 2005. –Vol. 71, № 11. – P. 7203-7216.
99. Rauter C., Oehme R., Diterich I. et al. Distribution of clinically relevant Borrelia genospecies in ticks assessed by a novel, single-run, real-time PCR // J Clin Microbiol. – 2002. –Vol. 40, № 1. – P. 36-43.
100. Richter D., Debski A., Hubalek Z. et al. Absence of Lyme disease spirochetes in larval ixodes ricinus ticks // Vector-Borne Zoonotic Dis. – 2012. – Vol. 12. - P. 21–27.
101. Richter D., Postic D., Sertour N. et al. Delineation of Borrelia burgdorferi sensu lato species by multilocus sequence analysis and confirmation of the delineation of Borrelia spielmanii sp. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. – 2006. – Vol. 56, № 4. – P. 873–881.
102. Rijpkema S.G., Molkenboer M.J., Schouls L.M. et al. Simultaneous detection and genotyping of three genomic groups of Borrelia burgdorferi sensu lato in Dutch Ixodes ricinus ticks by characterization of the amplified intergenic spacer region between 5S and 23S rRNA genes // J Clin Microbiol. – 1995. –Vol. 33, № 12. – P. 3091-3095.
103. Rollend L, Fish D, Childs JE. Transovarial transmission of Borrelia spirochetes by Ixodes scapularis: a summary of the literature and recent observations // Ticks and Tick-Borne Diseases. – 2013. – Vol. 4. – P. 46–51.
104. Rudenko N., Golovchenko M., Grubhoffer L. et al. Updates on Borrelia burgdorferi sensu lato complex with respect to public health // Ticks Tick Borne Dis. – 2011. − Vol. 2, №3. – P.123–128.
105. Scholz H.C., Margos G., Derschum H. et al. High prevalence of genetically diverse Borrelia bavariensis-like strains in Ixodes persulcatus from Selenge Aimag, // Ticks Tick Borne Dis. – 2013. –Vol. 4, № 2. – P. 89-92.
106. Schuijt, T.J., Hovius J.W., Van der Poll T. et al. Lyme borreliosis vaccination: the facts, the challenge, the // Trends Parasitol. – 2011. –Vol. 27, №1. – P. 40-47.
107. Seinost G., Dykhuizen D.E., Dattwyler R.J., Golde W.T. et al. Four clones of Borrelia burgdorferi sensu stricto cause invasive infection in humans // Infect Immun. – 1999. –Vol. 67, № 7. – P. 3518-3524.
108. Smith R.P.Jr., Muzaffar S.B., Lavers J. et al. Borrelia garinii in seabird ticks (Ixodes uriae), Atlantic Coast, North America // Emerg Infect Dis. – 2006. – Vol. 12, № 12. – P. 1909-1912.
109. Spratt B.G. Multilocus sequence typing: molecular typing of bacterial pathogens in an era of rapid DNA sequencing and the internet // Curr Opin Microbiol. – 1999. –Vol. 2, № 3. – P. 312-316.
110. Stackebrandt E., Goebel B.M. Taxonomic note: a place for DNA-DNA reassociation and 16S rRNA sequence analysis in the present species definition in bacteriology // International Journal of Systematic Bacteriology. – 1994. –Vol. 44, № 4. – P. 846-849.
111. Stanek G., Reiter M. The expanding Lyme Borrelia complex – clinical significance of genomic species // Clin. Microbiol. Infect. – 2011. –Vol.17, №4. – Р. 487-493.
112. Stanek G., Wormser G.P., Gray J., Strle F. Lyme borreliosios // Lancet. – 2012. –Vol.379, № 9814. – P. 461-473.
113. Steinbrink A., Brugger K., Margos G. et al. The evolving story of Borrelia burgdorferi sensu lato transmission in Europe // Parasitol Res. – 2022. − Vol.121, №3. – P. 781-803.
114. Strle F., Stanek G. Clinical manifestations and diagnosis of Lyme borreliosis // Curr. Probl. Dermatology. – 2009. – Vol. 37. – P. 51–110.
115. Strle K., Jones K.L., Drouin E.E. et al. Borrelia burgdorferi RST1 (OspC type A) genotype is associated with greater inflammation and more severe Lyme disease // Am J Pathol. – 2011. –Vol. 178, № 6. – P. 2726-2739.
116. Takano A., Nakao M., Masuzawa T. et al. Multilocus sequence typing implicates rodents as the main reservoir host of human-pathogenic Borrelia garinii in Japan // J Clin Microbiol. – 2011. –Vol. 49, № 5. – P. 2035-2039.
117. Urwin R., Maiden M.C.J. Multilocus sequence typing: a tool for global epidemiology // Trends Microbiol. – 2003. – Vol. 11. – P. 479-487.
118. Wang G., Liveris D., Mukherjee P. et al. Molecular Typing of Borrelia burgdorferi // Curr. Protoc. Microbiol. – 2014. – Vol.34. – P. 1-31.
119. Wang G., van Dam A. P., Schwartz I. et al. Molecular Typing of Borrelia burgdorferi Sensu Lato: Taxonomic, Epidemiological, and Clinical Implications // Clinical Microbiology Reviews. – 1999. − Vol. 12, №4. – P. 633-653.
120. Will G., Jauris-Heipke S., Schwab E. et al. Sequence analysis of ospA genes shows homogeneity within Borrelia burgdorferi sensu stricto and Borrelia afzelii strains but reveals major subgroups within the Borrelia garinii species // Med Microbiol Immunol. – 1995. –Vol. 184, № 2. – P. 73-80.
121. Wilske B., Busch U., Fingerle V. et al. Immunological and molecular variability of OspA and OspC. Implications for Borrelia vaccine development // Infection. – 1996. –Vol. 24, № 2. – P. 208-212.
122. Wilske B., Preac-Mursic V., Gobel U.B. et al. An OspA serotyping system for Borrelia burgdorferi based on reactivity with monoclonal antibodies and OspA sequence analysis // J Clin Microbiol. – 1993. – Vol. 31, №2. – P. 340-350.
123. Wilske B., Preac-Mursic V., Schierz G. et al. Antigenic variability of Borrelia burgdorferi // Ann N Y Acad Sci. – 1988. – Vol. 539. – P. 126-143.
124. Wormser G.P., Liveris D., Nowakowski J., Nadelman R.B. et al. Association of specific subtypes of Borrelia burgdorferi with hematogenous dissemination in early Lyme disease // J Infect Dis. – 1999. –Vol. 180, №3. – P. 720-725.
125. Wormser G.P., Brisson D., Liveris D. et al. Borrelia burgdorferi genotype predicts the capacity for hematogenous dissemination during early Lyme disease // J Infect Dis. – 2008. –Vol. 198, № 9. – P. 1358-1364.
126. Zhang J.R., Hardham J.M., Barbour A.G., Norris S.J. Antigenic variation in Lyme disease borreliae by promiscuous recombination of VMP-like sequence cassettes // Cell. – 1997. –Vol. 89, № 2. – P. 275-285.
Рецензия
Для цитирования:
Белкина Н.В., Драгомерецкая А.Г., Троценко О.Е. Возбудители иксодовых клещевых боррелиозов: видовое разнообразие и методы идентификации (обзор литературы). Дальневосточный журнал инфекционной патологии. 2022;(43):99-112.
For citation:
Belkina N.V., Dragomeretskaya A.G., Trotsenko O.E. Ixodic tick-born borreliosis causative agents: species diversity and identification methods (literature review). Far Eastern Journal of Infectious Pathology. 2022;(43):99-112. (In Russ.)
Просмотров:
9
Послать статью по эл. почте 